雙鏈特異性 dna 酶 (dsDNase)

PCR是在研究和診斷中檢測DNA存在的靈敏方法。PCR中使用的聚合酶經(jīng)常被大腸桿菌  DNA 污染  。當靶向少量細菌DNA時，污染的DNA可能會導致靈敏度降低和假陽性。其他污染源可能是dNTP，緩沖液成分和引物/探針，以及在處理過程中引入的DNA。細菌的檢測和分型可以通過使用針對保守區(qū)域（即16S或23S rDNA基因）的寬范圍引物進行。該方法對細菌DNA污染非常敏感，在大多數(shù)預混液和聚合酶中都可以發(fā)現(xiàn)細菌DNA的痕跡。當使用qPCR檢測或定量少量細菌DNA時，會污染  大腸桿菌 DNA可能導致假陽性結(jié)果。

雙鏈特異性 dna 酶 (dsDNase)

• 雙鏈 DNA 特異性核酸內(nèi)切酶

• 熱易滅活

• 引物無降解。

性質(zhì)

dsDNase 是一種內(nèi)切酶，可裂解 DNA 中的磷酸二酯鍵，產(chǎn)生具有 5’-磷酸和 3’-羥基末端的寡核苷酸。dsDNase 具有*的比活性，估計比牛 DNase I 高 30 倍，且不耐熱。dsDNase 對雙鏈 DNA (dsDNA) 有特別強的偏好性。在鎂僅作為二價陽離子和使用寡核苷酸作為底物的情況下，對 dsDNA 的活性比對 ssDNA 的活性高 5000 倍。因此該酶可用于特異性降解 dsDNA，使 ssDNA 基本完整。

來源：在畢赤酵母中重組生產(chǎn)。

活性：dsDNase 在 20-40 ℃ 溫度范圍內(nèi)具有高活性。至少需要 2.5 mm Mg

活性和宜 pH 值為 7.5。

熱滅活：dsDNase 在 65 ℃ 孵育 15 min *滅活，不可逆滅活需要 1 mM DTT。

儲存：-20 °C 條件下的短有效期為 2 年。4 °C 條件下可儲存至少 6 個月。該酶還可耐受多次凍融循環(huán)。

純度：dsDNase 純化至表觀均一性。

比活度：470 000 Kunitz 單位/mg。

單位定義：一個單位定義為 260 nm 處吸光度增加  0.001/min，在 50 mM 醋酸鈉 pH 值中使用 50 mg/mL 高 MW DNA

5.0 和 5 mM MgCl2 (Kunitz,1950)。

“從 PCR 預混液中快速去除污染 DNA”

熱滅活

0 5 10 15 20 25 30

時間 (min)

圖 1：dsDNase 的殘留活性。將 200µl 試驗緩沖液中的 60U dsDNase 在 65 ℃ 下孵育。在時間間隔取出等份試樣，并測定殘留活性。

dsDNase 特異性

使用標記為 5'-的 FAM 和 3'-的 DarkQuencher® 的 15 聚寡核苷酸測定 dsDNase 對底物的特異性。熒光隨時間的增加速率與酶活性成正比。在表 1 中，我們看到了 dsDNase 對雙鏈和單鏈 DNA 和 RNA 寡核苷酸的相對活性。

dsDNase 對雙鏈 DNA 具有高度特異性，使其他核酸不受損害。

PCR 預混液去污

大多數(shù)可用的 Taq 聚合酶被細菌 DNA 污染。這是基于 PCR 的細菌分型和檢測中的一個問題，會產(chǎn)生假陽性結(jié)果。dsDNase 的*性質(zhì)使其非常適合在加入 DNA 模板之前從 PCR 預混液中去除污染的 DNA。在圖 2 中，我們用不同量的 dsDNase 處理了 PCR 主混合物，并使用廣譜細菌 DNA 特異性引物檢測主混合物中終污染的細菌 DNA。僅未處理的 PCR 主混合物

在非模板對照 qPCR 中給出陽性信號。

圖 2：用 0、0.5、1 或 5U dsDNase 預孵育宜 PCR 緩沖液。所有 dsDNase 處理導致可擴增 DNA 的*去除。藍線：未處理的反應混合物。

工作流程-PCR 預混液的去污

向 PCR 預混液中加入 dsDNase

孵育并滅活 37 ℃，15 min-65 ℃，15 min

添加模板 運行 PCR